表觀遺傳多組學
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發(fā)布時間:2024-05-21 08:15:32 更新時間:2025-02-18 14:35:05
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表觀遺傳多組學DNA甲基化+轉錄組(RNA-seq)
聯(lián)合轉錄組(RNA-seq),可以了解樣本中DNA甲基化修飾和RNA表達是否存在整體上的相關性、樣本中哪些基因的轉錄表達受到DNA甲基化修飾的影響的基因及功能。
RNA甲基化(m6A修飾)+轉錄組(RNA-seq)
在進行m6A相關研究時結合轉錄組(RNA-seq),進一步挖掘RNA甲基化酶靶基因,探究轉錄本修飾水平與基因表達水平的相關性。
染色質(zhì)微環(huán)境多組學ATAC-seq+轉錄組(RNA-seq)
將 ATAC 與轉錄組 (RNA-seq) 關聯(lián)分析, 可以研究 ATAC 信號反映的染色質(zhì)開放性程度與基因表達調(diào)控的機制,評估用染色質(zhì)開放性闡述轉錄水平乃 至下游表型變化的可信度。
CUT&Tag+ATAC-seq+轉錄組(RNA-seq)
CUT&Tag 與 ATAC-seq 以及轉錄組 (RNA-seq)聯(lián)合分析,可以探究組蛋白標記調(diào)控和染色質(zhì)開放性的一致相關性,探究轉錄因子調(diào)控轉錄起始的過程,以及完善染色質(zhì)微環(huán)境調(diào)控基因表達的調(diào)控網(wǎng)絡。
Hi-C+轉錄組(RNA-seq)
整合 Hi-C 與轉錄組 (RNA-seq)數(shù)據(jù),用以研究染色體結構變化與基因表達調(diào)控之間的關系,從基因組、轉錄組兩種組學結合的視角闡述生物體性狀形成的相關機制。
DNA 甲基化 | 取樣標準 | 表觀遺傳學具有顯著的組織特異性,不同組織細胞間甲基化狀態(tài)可能會有巨大差異,重點需要參考老師的研究課題進行取樣 |
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測序深度 | 全基因組甲基化測序,測序深度建議 30×/ 樣 | |
RNA 甲基化 (m6A 修飾 ) | 取樣標準 | 取樣時間、部位、環(huán)境等盡量保持一致,不同類型的樣本可能會存在一定差異,針對具體研究部位 進行取樣 |
ATAC-seq | 取樣標準 | 取樣過程中,盡可能減少人為造成的樣品間差異,且確保自己的樣本沒有外源污染 |
CUT&Tag/ChIP-seq | 取樣標準 | 采集的樣本應該通過嚴格的細胞學、組織學、病理學等相關鑒定,且確保自己的樣本沒有外源污染 |
Hi-C | 取樣標準 | 微小個體生物,建議選擇相對近源的物種進行混樣,混樣個體切忌太多;含水量極高的樣本,建議 客戶多準備一些樣本,選擇底部細胞沉淀進行實驗;輔助組裝樣本盡可能保持與基因組樣本來自同 一個體 ( 或相對近源的個體 ) |
注:各組學樣本分裝保存并寄送 |
DNA 甲基化 | RNA 甲基化 | ATAC-seq | CUT&Tag/ChIP-seq | Hi-C |
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甲基化位點檢測 | 結合位點檢測 (peak calling) | 互作圖譜構建 | ||
單樣本甲基化分析 | Motif 分析 | 差異互作圖譜分析 | ||
功能區(qū)域甲基化水平分布 | 基因功能區(qū) peak 分布 | A/B compartments 分析 | ||
差異甲基化區(qū)域分析 | 差異分析 | TAD 分析 |
DNA 甲基化 | RNA 甲基化 (m6A 修飾 ) | ATAC-seq | CUT&Tag/ChIP-seq | Hi-C |
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與 RNA-seq 聯(lián)合分析 | ||||
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證書編號:241520345370
證書編號:CNAS L22006
證書編號:ISO9001-2024001
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